1. “Missing-self”机制?
NK细胞通过自身表面的激活型和抑制型受体,调节自身的细胞毒性。抑制型受体识别并结合MHC-I,杀伤那些没有表达MHC-I的细胞。而MHC-I在抗原呈递过程中,激活细胞毒性T细胞。但是,当细胞被感染或变异,MHC-I表达降低,使自身免于被T细胞发现。NK细胞可以在没有抗体或MHC的情况下,识别并快速响应。对于那些失去自身标记的MHC-I型细胞,NK细胞可以直接进行杀伤。
2. BTCKII NK试剂盒以K562细胞株为载体,在收获时会不会存在残留?
每批工程细胞都是经过定量的γ射线灭活,并进行了安全性、有效性测试。取D14天收获的NK细胞,通过STR方法检测BTCKII工程细胞残留,检测结果为无残留;“Missing-self”机制,D0在D4还能看到,D7(70%左右NK纯度)加进去的工程细胞D8天基本被清除。
3. 试剂盒制备可达到多少倍扩增?
BTCKII NK试剂盒第14天扩增可达10000倍左右,阳性率可达90%以上(计算方式:纯NK数量比较)。
4. 工程细胞在-80℃和液氮中可以储存多久?
-80℃半年有效期,液氮一年有效期。
5. 采集样本注意事项?
(1) 脐血采集:如果使用采血袋采集,建议使用200mL容量的采血袋(血液保存液III),建议弃14ml血液保存液。
(2) 外周血采集:无菌Heparin sodium抗凝真空采样管(10ml,推荐品牌:BD、非可替),禁止使用EDTA抗凝的真空采样管。
(3) 避免血液凝血,影响单个核收率;运输时,禁止样本接触冰袋,避免出现溶血。
6. 样本时限要求?
新鲜样本:要求采集到制备时间间隔6h内(尤其是脐带血),如超过24h则不建议进行NK培养。采集后2-8℃运输,外周血使用10mL无菌Heparin sodium采血管,采取外周血40mL,脐带血使用血液保护液III,采取脐带血至少80mL。
冻存样本:请确认使用冻存液类型以及该冻存方案是否能够完成复苏并进行NK细胞的培养,推荐使用我司通用型细胞冻存液(货号:FM-01)冻存单个核细胞。
7. 是什么原因导致样本出现凝血现象?
抗凝剂与血液样本没有混合均匀。
8. 我公司淋巴细胞无血清培养基的优势?
我公司无血清培养基与BTCKII NK细胞培养试剂盒适配良好,可以按照推荐操作步骤培养,价格相对较低。推荐其他公司无血清培养基:LONZA X VIVO15(货号:04-418Q)。
9. 培养基使用前,是否需要将培养基预热?
培养基使用前,可以将培养基放在室温回温,也可将使用的培养基放在37℃的水浴锅中预热,禁止将整瓶培养基反复预热。
10. IL-2推荐使用浓度和品牌?
我司NK制备推荐使用浓度为200IU/mL IL-2,品牌为北京双鹭。
11. 淋巴细胞分离液使用注意事项?
操作前将样本和淋巴细胞分离液复温。吸取过多的白膜层下方分离液会导致粒细胞数量增加,吸取过多的淋巴细胞层上层溶液会导致血浆蛋白及血小板混杂。
12. 脐血样本红细胞量较大,应怎样尽可能减少红细胞干扰?
(1) 淋巴细胞分离液和样本使用前恢复至室温(20℃);
(2) 增加HES去除红细胞操作;
(3) 吸取白膜层时避吸到下方其它细胞。
13. 血浆灭活条件
56℃,20-30min(温度保持在56℃至少20min),灭活后2000g,10min去除沉淀。
14. 什么原因导致血浆颜色偏红?
可能在运输过程中,剧烈震荡、样本接触冰块或放置时间过长,导致红细胞破裂,产生溶血现象。
15. 制备中培养瓶和培养袋要求?
(1) 要求使用TC处理水平较高的贴壁细胞培养瓶。
(2) 推荐使用CORNING或TAKARA的细胞培养袋(可以咨询技术支持)。
(3) 大的细胞培养袋培养小体积的细胞悬液时,应将培养袋折叠,使用合适的底面积。
16. 在培养过程中,培养基呈现果冻状,什么原因导致?
血浆没有灭活或灭活不完全,血浆中的蛋白成分与培养基相互作用导致培养基呈果冻状。
17. 分离单个核细胞后,细胞数量过多或过少怎么办?
正常情况下,50ml样本可以分离一个亿以上单个核细胞,细胞数量过多可以考虑单个核细胞冻存,细胞过少应及时考虑单个核细胞分离实验细节,是否完全收集全部单个核细胞。
18. 样本接种密度和数量是多少?建议加大或减少接种密度么?
建议接种密度为2*106个/ml,接种数量为4*107个/瓶,D0体积一般为20ml培养基+1ml血浆;不建议加大或减少接种密度,否则可能导致试剂盒的工程细胞数不匹配,影响最终收获细胞数量或者阳性率。
19. 工程细胞复苏过程?
BTCKII-1ml:取BTCKII-1ml工程细胞,38℃水浴,浮漂解冻1分45秒(理想状态为取出时管内刚好还有一小块冰),加入含有9ml预冷的复苏洗涤液的离心管中,离心(500g,3min,快升快降)弃上清,使用培养基重悬工程细胞。
BTCKII-4ml:当细胞体积达到100-120ml时,取BTCKII-4ml工程细胞,38℃水浴,浮漂解冻2分40秒(理想状态为取出时管内刚好还有一小块冰),解冻后加入9ml预冷的复苏洗涤液的离心管中,离心(500g,3min,快升快降)弃上清,使用培养基重悬工程细胞。
20. 工程细胞复苏前在-20暂存可不可以?
不可以,-20—-40℃左右容易重结晶。解冻前要维持-70℃以下。
21. BTCKII-1mL工程细胞接种后几天激活?
BTCKII-1mL加入后3~4天激活。
22. Day0天制备样本的离心参数?
梯度离心:样本铺到淋巴细胞分离液上,离心(外周血:500g,30min,慢升慢降;脐带血:700g,30min,慢升慢降);第二次离心:将单个核细胞取出时加入生理盐水,此时离心管中有血浆、细胞、盐水,离心(400g,8min,快升快降);第三次离心:此时对细胞进行洗涤离心(300g,8min,快升快降)。
23. 为什么Day0~3要静置培养?
主要原因:影响工程细胞和NK细胞之间的接触与信号传递,可能会延迟NK细胞激活时间。同时可能会导致培养体系损失水分影响渗透压/PH,从而影响NK细胞激活。
24. Day 7二轮刺激应注意什么?
1) 培养基呈橙黄或黄,体积不超过200ml,计数超过2*106个/ml,进行二轮刺激操作。
2) 转袋操作:将瓶内细胞轻轻吹悬,加入培养袋,使用培养基清洗原培养瓶,将细胞尽量都转移至培养袋中;
25. Day14细胞收集培养袋中细胞密度一般在什么范围?
3.0-4.0*106/mL,活率≥90%
26. NK细胞冻存密度?
1.0*108个/ml左右;
27. 什么原因导致复苏单个核细胞活率低,回收率低?
在冻存或复苏过程中操作不规范,波动较大。复苏单个核细胞时,应选择15ml离心管,损耗会降低。
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